抑菌門標準

抑菌門標準

1、抑菌自動化智能門/消毒通道的CE測試標準是EN60601-1、EN60601-1-2醫療標準FCC測試標準PART15B

2、辦理流程為：填寫檢測公司提供的申請表-寄樣機測試-測試通過發放合格證書，此次《抗菌木門》團體標準（簡稱為《標準》）的編制與實施，將對抗菌木門市場起到規范和引導作用，為抗菌木門產業規范發展提供參考，保障并助推產業有序發展，并對消費者權益起到保護作用。

3、抗菌噴涂,抑菌潔凈 薩瓦尼抗菌系列產品,在生產制造中嚴格按照抗菌工藝標準的要求,門扇表面噴涂專業的無機抗菌粉末,釋放銀離子,使門扇自身具有殺菌和抑制細菌

4、技術要求：醫院專用門門扇：門扇厚度40mm。1、門扇表面采用5mm厚阻燃抑菌板，表面耐磨、耐劃傷、阻燃，防火等級B1級，顏色待定。

5、本標準規定了抑菌類產品的技術要求、試驗方法、檢測規定、標志、包裝、

運輸、貯存。

本標準適用于當歸、白芷、紫草、甘草、輕粉、血竭等為原料，經水浸濃縮配

以各基質及純化水制備而成的抑菌產品，用于皮膚表面抑菌防護。

6、抑菌門檢測可對纖維及紡織品、皮革、合成高分子材料等材料抗菌抑菌性能檢測。各個國家及地區有著不同的檢測標準，

產品需符合當地的標準。各個國家及地區檢測標準如下:

一、中國常用方法:

GB/T 20944紡織品抗菌性能的評價

FZ/T 73023抗菌針織品

GB 15981消袁與滅菌效果的評價方法

GB 15979一次性使用衛生用品衛生標準衛生部《消毒與技術規范》

QB/T 2591抗菌塑料-抗菌性能試驗方法和抗菌效果

JC/T 7、897抗菌陶瓷制品抗菌性能

抑菌塑料——抑菌性能試驗方法和抑菌效果 QB/T 4341-2012 抑菌聚氨酯合成革 抑菌性能試驗方法和抑菌效果 抑菌金屬標準 GB/T 24170.1-2009 表面抑菌不銹鋼 

抗菌和抑菌效果評價方法

1范圍

本標準規定了抗菌和抑菌評價方法的選擇原則和使用。

本標準適用于具有抗菌和(或)抑菌功能產品的抗菌、抑菌效果的鑒定。

2規范性引用文件

下列文件對于本文件的應用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，僅所注日期的版本適用于本文

件。凡是不注日期的引用文件，其新版本( 包括所有的修改單)適用于本文件。

GB15979-次性使用衛生用品衛生標準

FZ/T 73023抗菌針織品

消毒技術規范(2002版) 衛生部 (衛法監發(2002) 282號)

3術語和定義

下列術語和定義適用于本文件。

3.1

抗菌antibacterial

采用化學或物理方法殺滅或妨礙細菌生長繁殖，可減少其數量以及活性的過程。

3.2

抑菌bacter iostasis .

采用化學或物理方法抑制或妨礙細菌生長繁殖及其活性的過程。

3.3

持續抗菌作用sustained antibacterial action

具有抗菌作用的消毒產品涂于物體表面，持續7d以上仍具有殺滅或妨礙細菌生長繁殖作用。

3.4

中和劑neutralizer

在殺滅微生物試驗中,用以消除試驗微生物與消毒劑的混懸液中,以及微生物表面上殘留的消毒劑，

使其失去對微生物抑制和殺滅作用的試劑。

4評價方法的選擇原則.

4.1抗菌試驗 與抑菌試驗區別

抗菌試驗:測定抗菌產品對細菌和真菌的抗菌作用，試驗過程中需要用中和劑終止殺菌作用。

抑菌試驗:測定抑菌產品對細菌和真菌的抑菌作用，試驗過程中不需要使用中和劑終止抑菌作用。

4.2根據產品性能選擇合適的評價方法

4.2.1抑菌效果評價方 法的選擇原則

抑菌類產品選擇抑菌效果評價方法。液體抑菌產品選擇懸液定量抑菌試驗，膏體或半固體凝膠類、

黏稠狀抑菌產品選擇載體浸泡定量抑菌試驗，濕巾類或其他自身含有抑菌成分的產品選擇載體抑菌試

驗，肥皂類固體抑菌產品選擇抑菌環試驗，含有可溶性抑菌成分的紡織品選擇浸漬抑菌試驗，含有持續

抑菌作用的抑菌洗液選擇滯留抑菌試驗。

4.2. 2抗菌效果評價方 法的選擇原則

抗菌類產品選擇抗菌效果評價方法。液體抗菌產品選擇懸液定量殺菌試驗，凝膠狀或膏狀抗菌產品

選擇載體浸泡定量殺菌試驗，濕巾類或其他自身含有抗菌成分的產品選擇載體殺菌試驗，含有可溶性抗

菌成分的紡織品選擇浸漬抗菌試驗。

含有不可溶抗菌成分的紡織品、無紡布、纖維等，經鑒別不含可溶性抗抑菌成分后，采用燒瓶振蕩

試驗。

含有不可溶抗菌成分的瓷磚、塑料、金屬、涂料等，采用貼膜試驗:對于涂于表面，干燥后具有持

續抗菌作用的產品，進行持續抗菌試驗。

5評價方法

5.1 抑菌效果

5.1.1懸液定 量抑菌試驗

5.1.1.1 適用范圍

適用于液體抑菌制劑如衛生洗液、抑菌噴霧劑等對微生物抑菌效果的測定。

5.1.1.2 試劑、培養基及器材

5.1.1.2.1試驗菌株

金黃色葡萄球菌(ATCC 6538) 、大腸桿菌(8099) 、白色念珠菌(ATCC 10231) 及根據抑菌劑特

定用途所用的其他菌株。

5.1.1.2.2 試劑

稀釋液: 0.03 mo1/L 磷酸鹽緩沖液(PBS) (pH7.2~7.4) ，培養基:金黃色葡萄球菌和大腸桿

菌的培養使用營養瓊脂培養基，白色念珠菌的培養使用沙氏瓊脂培養基。

5.1.1.2.3 器材

恒溫水浴箱、計時器、II 級生物安全柜等。

5.1.1.3 試驗步驟

取試驗菌24h新鮮斜面培養物用PBS洗下，用PBS稀釋至約5.0X 10 CFU/mL~4. 5X 10' CFU/mL菌懸液

備用。取無菌試管，先加入5. 0 m樣品(根據使用說明書要求使用原液或稀釋液)，置20'C士1'C 水浴

中5min后，再加入0. 1 mL試驗用菌懸液，迅速混勻并立即計時。待試驗菌與樣品相互作用至說明書的規

定時間，分別吸取1.0 mL試驗菌與樣品混合液接種2個平皿，傾注培養基。菌量無法計數時，以PBS做10

倍系列稀釋，選適宜稀釋度分別吸取1.0 mL接種2個平皿，做活菌培養計數。同時用PBS代替樣品，進行

平行試驗，作為陽性對照。陽性對照回收菌落數在1.0X10* CFU/mL~9.0X 10* CFU/mL之間。 取同批次

PBS、培養基作陰性對照。所有試驗樣本和對照樣本均在36"C土1'C培養，細菌繁殖體培養48h觀察終

結果;白色念珠菌培養72h觀察終結果。試驗重復3次，計算抑菌率。

5.1.1.4 抑菌率計算

x=1

Ao-A

x ...

(1)

Ao

式中:

X一抑菌率，%;

A一陽性對照組回收菌量，單位為CFU/mL;

A-試驗組回收菌量，單位為CFU/mL。

5.1.1.5 結果判定

抑菌率≥50%~90%，判有抑菌作用:抑菌率≥90%，判有較強抑菌作用。

5.1.2載體浸泡定 量抑菌試驗

5.1.2.1適用范圍

適用于膏體或半固體凝膠類、黏稠狀抑菌產品對微生物抑菌效果的測定。

5.1.2.2 試劑、培養基及器材

載體為10 mmX 10 mm脫脂白平紋布片，脫脂方法依照《消毒技術規范》(2002版) 進行，使用前壓

力蒸汽滅菌備用，電子天平(d=0.01g) ，其它同

5. 1.1.2。

5. 1.2.3 操作步驟

取試驗菌24h新鮮斜面培養物用PBS洗下，用PBS稀釋至約5.0X 10° CFU/mL~5. 0X 10' CFU/mL制成菌

懸液備用。用微量移液器滴染10 μ 1菌懸液于滅菌載體上，36"C 土1C烘干或室溫晾干備用。

按5 g/片的量稱取樣品于無菌平皿內，置20"C士1"C水浴5min，用無菌鑷子取染菌載體，使載體完

全浸沒于樣品中，立即計時。待染菌載體與樣品相互作用至說明書的規定時間，分別取染菌載體加入5.0

mLPBS試管中，混勻，振蕩，將試驗菌洗下，分別吸取1. 0 m樣液，按活菌培養計數方法測定存活菌數，

每管樣液接種2個平皿。如平板上生長的菌落數較多時，可用PBS進行10倍系列稀釋后，再進行活菌培養

計數。取10. 0 g與試驗樣品同質材料不含抑菌成分的對照樣品浸泡2片染菌載體進行平行試驗，作為陽

性對照。陽性對照回收菌量為1.0X10* CFU/片~9. 0X10* CFU/片。取同批次PBS、培養基作陰性對照。

所有試驗樣本和對照樣本均在36°C土1°C培養，細菌繁殖體培養48h觀察結果;白色念珠菌培養72h觀察

結果。試驗重復3次，計算抑菌率。

5.1.2.4抑菌率計算

x=

Ao-A

Ao

式中:

X一抑菌率，%;

Ao一對照樣品的平均菌落數，單位為CFU/片:

A-被試樣品平均菌落數，單位為CFU/片。

5.1.2.5 結果判定

抑菌率≥50%~90%，判有抑菌作用;抑菌率≥90%，判有較強抑菌作用。

5.1.3載體抑菌 試驗

5.1.3.1適用范圍

適用于含溶出性抑菌成分的濕巾、無紡布口罩、衛生巾、護墊、尿布等固體類抑菌產品對微生物抑

菌效果的測定。

5.1.3.2 試劑、培養基及器材

見5.1.1.2。

二一

5.1.3.3 試驗步驟

取試驗菌24h新鮮斜面培養物用PBS洗下，用PBS稀釋至約10* CFU/mL~ 10° CFU/mL,制成菌懸液備用。

用滅菌剪刀在無菌條件下將試驗樣品和對照樣品分別剪成20mmX30mm樣片備用。試驗時滴加0.1mL

菌懸液。對照樣片染菌前需經壓力蒸汽滅菌。取無菌平m，用無菌鑷子取2片試驗樣片，勿重疊，置20"C

士1C水浴5min，在每一樣片上滴加0.1mL試驗用菌懸液，立即計時。待試驗菌與樣片接觸作用至說明

書的規定時間，分別夾取染菌樣片加于5.0 mLPBS試管中，混勻。振蕩洗脫，分別吸取1.0 mL.樣液， 按

活菌培養計數方法測定存活菌數，每管樣液接種2個平皿。如平板上生長的菌落數較多時，可10倍 系列

稀釋后，再進行活菌培養計數。

同時用與試驗樣品同質材料不含抑菌成分的對照樣片2片代替試驗樣片進行試驗，作為陽性對照，

陽性對照回收菌量為1.0X10* CFU/片~9. 0X10' CFU/片;取同批次PBS、培養基作陰性對照。

所有試驗樣本和對照樣本均在36"C土1C培養，細菌繁殖體培養48h、白色念珠菌培養72h觀察終

結果。試驗重復3次，計算抑菌率。

5.1.3.4抑菌率計算

見式(2)。

5.1.3.5結果判定

抑菌率≥50%~90%，判有抑菌作用;抑菌率≥90%，判有較強抑菌作用。

5.1.4抑菌環試驗

5.1.4.1適用范圍

適用于含溶出性抑菌物質，可制成直徑為5 mm片狀物的固體抑菌產品的抑菌效果鑒定;也可用于鑒

別抗抑菌樣品中是否含有可溶性抑菌物質。

5.1.4.2 試劑、培養基及器材

游標卡尺，其它見5. 1.1.2

5.1.4.3 試驗步驟

將試驗菌24h新鮮斜面培養物用PBS洗下，稀釋至5. 0X10° CFU/mL~5. 0X 10° CFU/mL 備用。

抑菌片的制備:溶出性固體抑菌產品，直接制成直徑為5 mm，厚度不超過4 mm圓片(塊)，每4片

為一組。

陰性對照樣片的制備:取同種材質不含抑菌成分的樣本，制成與試驗組大小相同的圓片(塊)。

用無菌棉拭子蘸取濃度為5.0X10° CFU/mL~5. 0X 10”CFU/mL試驗菌懸液，在適宜的培養基平板表

面均勻涂抹3次。每涂抹1次，平板應轉動60°，后將棉拭子繞平板邊緣涂抹- -周。 蓋好平皿，置室溫

干燥5min。

每次試驗貼放1個染菌平板，每個平板貼放4片試驗樣片，1片陰性對照樣片，共5片。用無菌鑷子

取樣片貼放于平板表面，陰性對照樣片貼于平板中心位置，試驗樣片貼于四周，貼放好后，用無菌鑷子

輕壓樣片，使其緊貼于平板表面。各樣片中心之間相距25 mm以上，與平板的周緣相距15 mm以上。蓋好

平板，置36C土1°C培養16h~ 18h觀察結果，試驗重復3次。

用游標卡尺測量抑菌環的直徑( 包括貼片)并記錄，測量抑菌環時，應選均勻而完全無菌生長的抑

菌環進行，測量其直徑應以抑菌環外沿為界。

5. 1.4.4 結果判定.

陰性對照樣片應無抑菌環產生,試驗樣品抑菌環直徑> 7 mm者,判為有抑菌作用:抑菌環直徑≤7 mm

者，判為無抑菌作用。

3次重復試驗(共12個樣片)均有抑菌作用，則判為合格。

5.1.5浸漬抑菌試驗

5. 1.5.1 適用范圍.

適用于溶出性抑菌織物(如抑菌毛巾、口罩、內衣等)抑菌效果的測定。

5.1.5.2 試劑、培養基及器材

5. 1.5.2.1 試驗菌株見5.1.1.2.1

5.1.5.2.2 試樣

在距試樣布邊10 cm以上、離布端1 m以上部位，剪取直徑為5 cm的圓形試樣若干，取3份試樣分別

裝于3個錐形瓶中，蓋好瓶口備用(需用試樣數量要根據纖維類別及織物織法而定，以能吸收1 mL菌液

且錐形瓶中不留殘液為度)。另同法剪取與試樣相同材質但不含抑菌劑對照織物若干，取2份分別裝于2

個錐形瓶中，蓋好瓶口，121C 滅菌15min備用。

5. 1.5.2.3 試劑和培養基

0. 03 mol/L PBS (pH7.2~7.4)，肉湯培養基、營養瓊脂培養基、沙氏培養基。

5.1.5.2.4菌懸液的制備

用接種環將保存的菌種以劃線法接種到營養瓊脂平板，36°C土1C培養24h,取典型的菌落移種到含

肉湯培養基的錐形瓶中，36"C土1°C培養24h,用肉湯對培養液進行系列稀釋，使菌懸液的含菌量為1.0

X 105 CFU/mL~5. 0X 10 CFU/mL。

5.1.5.3試驗 步驟

分別取1mL菌懸液加入2份準備好的錐形瓶內試樣和1份對照織物上，確保其均勻分布，且錐形瓶中

不留多余液，封好瓶口，以防蒸發造成細菌死亡。分別在-一個盛有已接種菌懸液的試樣和對照織物的錐

形瓶中加入100 mLPBS， 置渦旋振蕩器上振蕩lmin洗滌細菌，分別吸取1.0 mL樣液或10倍系列稀釋液接

種2個平皿，作為“0”接觸時間樣本和對照織物上的細菌數。

將另一個裝有已接種菌懸液試樣的錐形瓶于36"C士1°C培養20h士2h，加入100mLPBS，置渦旋振蕩

器上振蕩1min洗滌細菌，分別吸取1.0 mL樣液或10倍系列稀釋液接種2個平皿，作為試驗組。

陰性對照組，試樣不接種菌懸液，在“0”接觸時間加入100 mLPBS,置渦旋振蕩器上振蕩lmin取樣，

接種平皿。

陽性對照組，另取1個裝有對照織物的錐形燒瓶，接種1 mL菌懸液后，在36°C士1C培養20 h土2h,

加入100 mLPBS，置渦旋振蕩器上振蕩lmin洗滌細菌，分別吸取1.0 mL樣液或10倍系列稀釋液接種2個平

皿。將陰性和陽性對照樣本與試驗組樣本一并放36°C士1"C培養48h，計數菌落數，試驗重復3次。

5.1.5.4計算抑菌率

X=

B或C或[(B +C)/2]-A

1006丁.

B或C或[(B +C)]/2

x .....

式中:

X一抑菌率，%;

A一試驗組試樣上的細菌數，單位為CFU/mL;

cin.com

B-“0”接觸時間試樣上的細菌數，單位為CFU/mL;

C-“0”接觸時間對照織物上的細菌數，單位為CFU/mL;

如果“B"和“C”差別較大時，取較大值:如果“B"和“C”差別不大時，取平均值。

5.1.5.5 結果判定

試驗成立條件要求:“0” 接觸時間對照織物的平均回收菌量為1X 10' CFU/mL~5X 10* CFU/mL;陰

性對照應無菌生長，陽性對照菌數比0接觸時間的菌數明顯增加。

各次試驗的抑菌率均≥50%，即可判定該樣片具有抑菌作用。

5.1.6 滯留抑菌效果試驗

5.1.6. 1適用范圍

適用于有持續抑菌作用的抑菌洗液類抑菌產品的滯留抑菌效果鑒定。

5.1.6.2 試劑、培養基及試驗器材

試驗菌株:金黃色葡萄球菌(ATCC 27217)

試驗產品:試驗品為25套按順序編號的樣品。每套2瓶，-瓶為測試樣品，另一瓶為不含抗(抑)

菌劑的對照樣品。

不含抑菌劑的用品25瓶(試驗調整階段用)。

胰蛋白酶大豆肉湯培養基(TSB) 、胰蛋白酶大豆瓊脂培養基(TSA) 、羊血、經脫纖維處理、0. 075

mol/L的磷酸鹽緩沖液、70%酒精、金屬筒(直徑2.2 cm、高度3 cm) 、-次性接種環(直徑4 mm)、

小塑料碗(直徑2.2 cm， 高2.5 mm,)、膠帶(Darapore, 3M公司生產)、尼龍刮菌棒、聚乙二醇單辛

基苯基醚(曲拉通X-100; Triton-X 100 ) 500 mL、外用軟膏、玻璃彎棒、皮膚消毒劑等。 .

5.1.6.3 試驗步驟

5. 1.6.3.1 調整階段

試驗開始前7d至14d，受試者 使用不含抗(抑)菌成分的香皂、洗發水和沐浴液進行日常的洗手、

洗澡，此階段持續至少7d，但不超過14d。

5.1.6.3.2清洗階段

清洗階段共3d,受試者每天用有持續抑菌作用的抑菌洗液類樣品清洗--側前臂，用對照樣品清洗另

-側前臂，清洗過程如下:

先清洗左臂，用水溫為35"C ~37C的流動水潤濕前臂內側;取樣液3 mL于手心中;從手腕至臂肘

上下涂擦60s;用流動的清水沖洗前臂15s， 不要搓擦;用紙巾沾干前臂，不要搓擦;用不含抑菌成分

的對照樣品重復以上步驟清洗右臂;按上面所描述的試驗步驟每日清洗前臂3次，每次間隔至少1h，在

后一次清洗之后，需記錄好時間，在12h之 后,進行滯留效果檢測。在第9次清洗前臂以后，受試者不

能洗澡、淋浴或洗凈前臂，直到試驗結束。

5.1.6.3.2清洗階段

清洗階段共3d,受試者每天用有持續抑菌作用的抑菌洗液類樣品清洗--側前臂，用對照樣品清洗另

一.側前臂，清洗過程如下:

先清洗左臂，用水溫為35"C ~37°C的流動水潤濕前臂內側:取樣液3 mL于手心中;從手腕至臂肘

上下涂擦60s;用流動的清水沖洗前臂15s， 不要搓擦;用紙巾沾干前臂，不要搓擦;用不含抑菌成分

的對照樣品重復以上步驟清洗右臂;按上面所描述的試驗步驟每日清洗前臂3次，每次間隔至少1h，在

后一次清洗之后，需記錄好時間，在12h之后,進行滯留效果檢測。在第9次清洗前臂以后，受試者不

能洗澡、淋浴或洗凈前臂，直到試驗結束。

5.1.6. 3.3試驗階段

后一次清洗后的12h或24h， 將在受試者每只前臂.上劃出一個試驗區，對試驗區進行接種、封包

和回收存活細菌,具體步驟如下:

將金黃色葡萄球菌(ATCC 27217)連續轉種3代,取第3代培養物接種于胰蛋白大豆肉湯培養基(TSB)

中，在36°C土1C的條件下培養20h土2h。然后用TSB適當稀釋菌懸液，使菌懸液濃度約為10'CFU/mL~

10° CFU/mL。

接種:在受試者的每只前臂中間部位(不要在手腕和肘皺褶處)，用帶有印墨直徑為3.00 cm的玻

璃量筒扣在皮膚.上，劃分出一個試驗區。使用加樣器取10μL上述菌懸液，接種于前臂試驗區(菌落數

為10° CFU/試驗區~107 CFU/試驗區)，用一次性接種環，把接種物涂成- - 圓形，使其與試驗區邊緣應

有4 mm~5 mm的距離。

封包:細菌接種后立即用小塑料碗扣于染菌區上面,再用膠帶將小塑料碗固定在皮膚上，記錄封包

的時間。

回收存活細菌:接種后2h士5min對前臂上接種的區域進行取樣。將金屬筒放置于試驗區中間部位，

不要接觸到蓋有印墨的邊緣。將1 mL含0.1% Triton X 100的0. 075 mol/L磷酸鹽緩沖液吸移至金屬筒內，

用尼龍刮菌棒刮洗金屬筒罩住區域內的皮膚60s,將筒內液體吸移至試管內，再加1mL含0.1%Triton

X-100的0. 075 mol/L磷酸鹽緩沖液，對該區域內的皮膚進行第二次刮洗30s，將第二次擦洗的液體，注

入含次刮洗液體的試管中。

實驗區試驗后的消毒處理:對抑菌樣品組清洗后的實驗區采樣之后,需用70%的酒精對實驗區進行消

毒。然后對無抑菌成分的對照組清洗后的實驗區以同樣方法進行采樣、消毒。實驗結束后，用皮膚消毒

劑對兩只前臂進行消毒處理，處理后清水沖洗，擦干，再涂少量的軟膏。

接種與培養:對每-一個取樣進行接種，以0.0375mol/L磷酸鹽緩沖液對樣品進行10倍系列稀釋，選

適當稀釋度取0.1 mL接種于2個含5%羊血的TSA平板表面，用玻璃彎棒涂勻，在36C土1°C的培養箱中培

養48h士4h,計數菌落數。

以試驗同批次的稀釋液、培養基等分別設陰性對照。

5.1.6. 4抑菌率的計算

A- B

X=.

.x .

... (4) 

A

式中:

X--抑菌率%

A--對照平均菌落數，單位為CFU/ 試驗區

B--試驗平均菌落數，單位為CFU/ 試驗區

5.1.6.5判定標準

各次試驗陰性對照菌無菌生長。

實驗不得少于16人次，抑菌率均≥50%，可判定該產品在規定的時間內有滯留抑菌作用。

5.2 抗菌效果

5.2.1懸液定量殺菌試驗

5.2.1.1 適用范圍.

適用于液體抗菌產品(如液體抗菌液、抗菌噴霧劑等)對微生物抗菌效果的測定。

5.2. 1.2 試劑、培養基及器材

中和劑(用PBS配制)，其它見5. 1. 1.2。，

5.2.1.3菌懸液配制●

取試驗菌24h新鮮斜面培養物用PBS洗下，用PBS稀釋至約5. 0X 10° CFU/mL~4. 5X 10" CFU/mL菌懸液

備用。

5.2. 1.4 中和劑鑒定試驗

5.2.1.4.1 分組

第1組: 5.0 mL中和劑+ 0.1 mL菌懸液→培養

第2組: (0.5 m抗菌劑+ 4.5 mL中和劑) + 0.1 m菌懸液→培養

第3組: 5.0 mL稀釋液+0.1 mL菌懸液→培養

第4組:稀釋液+中和劑+培養基→培養

5.2.1.4.2步驟

根據試驗分組，準備試管和平皿，進行編號。

第1組:取5. 0 mL中和劑，置20'C 土1'C水浴中10min后，加入0. 1 mL試驗菌懸液，混勻，作用10min, .

用中和劑做10倍系列稀釋，選適宜稀釋度分別吸取1.0 mL接種于2個平皿中，做活菌培養計數。

第2組:取4.5 mL中和劑于試管內，加入0.5 mL抗菌劑，混勻，置20C 土1°C水浴中10min制成中和.

產物，加入0. 1 mL試驗菌懸液，混勻，作用10min,用中和產物做10倍系列稀釋，選適宜稀釋度分別吸

取1.0 mL接種于2個平皿中，做活菌培養計數。

第3組:取5. 0 mLPBS，置20"C 士1'C水浴中10min,加入0. 1 m試驗菌懸液，混勻，作用10min,用

PBS做10倍系列稀釋，選適宜稀釋度分別吸取1.0 mL接種2個平皿，做活菌培養計數。

第4組:分別吸取稀釋液(PBS) 、中和劑各1. 0mL于同- -無菌平皿內，倒入上述試驗同批次的培養

基15 mL~20 mL，作為陰性對照組培養觀察。

5.2.1.4.3結果判定

第1、2、3組有相似量試驗菌生長，且菌量在1.0X 10' CFU/mL ~9.0X 10' CFU/mL;計算組間菌落數

誤差率，其組間菌落數誤差率應不超過15%;第4組無菌生長，否則，說明試劑有污染，應更換無污染的

試劑重新進行試驗。

試驗重復3次，每次試驗均應符合以上要求。

5.2. 1.5 試驗步驟

取無菌試管，先加入5. 0 mL抗菌劑(說明書規定的使用濃度)，置20"C士1'C水浴中5min后，再加

入0.1 mL試驗用菌懸液，迅速混勻并立即計時。

待試驗菌與抗菌劑相互作用至各預定時間(以說明書規定時間為T，時間分別為0. 5T, T，1.5T) ,

分別吸取0.5 mL試驗菌與抗菌劑混合液加于4.5 m中和劑中，混勻。

各管試驗菌與抗菌劑混合液經中和劑作用10min后，分別吸取1.0 mL樣液，按活菌培養計數方法測.

定存活菌數，每管樣液接種2個平皿。如平板上生長的菌落數較多時，可用PBS進行10倍系列稀釋后，再

進行活菌培養計數。

同時用PBS代替消毒液，進行平行試驗，作為陽性對照。陽性對照回收菌落數在1.0X 10* CFU/mL~

9.0X 10' CFU/mL。取同批次稀釋液、中和劑、培養基作陰性對照。

所有試驗樣本和對照樣本均在36°C土1'C培養，對細菌繁殖體培養48h觀察終結果;對白色念珠菌

需培養72h觀察終結果。試驗重復3次，計算殺菌率。

5.2. 1. 6殺菌率計算

A- B

X=

.x

(5)

A

式中:

X一殺菌率，%;

A一陽性對照組回收菌量，單位為CFU/mL;

B一試驗組回收菌量，單位為CFU/mL.

5.2.1.7 結果判定

說明書規定時間的殺菌率≥90%，判有抗菌作用;說明書規定時間的殺菌率≥99%,判為較強抗菌作

用。

5.2.2載體 浸泡定量殺菌試驗

5.2.2.1適用范圍.

適用于粘稠狀(半固體)抗菌產品如抗菌洗手液、抗菌沐浴露、抗菌凝膠、膏狀抗菌產品等對微生

物抗菌效果的鑒定。.

5.2.2.2 試劑、培養基及器材

中和劑(PBS配制)，其它見5. 1.2.2。

5.2. 2.3染菌載體制備

取試驗菌24h新鮮斜面培養物用PBS洗下，用PBS稀釋至約5X 10° CFU/mL~ 5X 107 CFU/mL制成菌懸液

備用。用微量移液器滴染10μ 1菌懸液于滅菌載體上，36C土1C烘干或室溫晾干備用。

5.2.2.4中和劑鑒定試驗

5.2.2.4. 1試驗 分組

第1組: 5.0 mL中和劑+染菌載體→培養

第2組: ( 含抗菌劑的載體+ 5. 0 mL中和劑) +染菌載體→培養

第3組: 5.0 mL稀釋液+染菌載體→培養

第4組:稀釋液+中和劑+培養基→培養

5.2. 2. 4.2試驗 步驟

根據試驗分組，準備試管和平皿，依次進行編號。

第1組:取5. 0 mL中和劑于無菌平皿中，置20C土1'C水浴5min,加入1片染菌載體，作用10min,取

出菌片放入5.0 m中和劑試管內，作用10min后，置渦旋振蕩器上振蕩1min或在手掌上用力振打80次，.

將試驗菌洗下，用中和劑做10倍系列稀釋后，選擇適宜稀釋度，分別吸取1. 0 m接種于2個平皿中，做

活菌培養計數。

第2組:取5. 0 mL中和劑于無菌平皿內，加入1片沾有抗菌樣本的載體，混勻，置20C士 1°C水浴作

用10min制成中和產物。再用無菌鑷子取1片染菌載體，浸于中和產物中作用10min后，用無菌鑷子取出

染菌載體移入含5.0 mL中和產物試管中，作用10min， 振蕩，將試驗菌洗下，用中和產物做10倍系列稀

釋,選適宜稀釋度分別吸取1.0 m接種于2個平皿中，做活菌培養計數。

第3組:取5. 0 mLPBS于無菌平皿中，置20"C土1'C水浴5min，加入1片染菌載體，作用10min，取出

菌片放入5.0 mLPBS試管內，作用10min后，振蕩，將試驗菌洗下，用PBS做10倍系列稀釋，選適宜稀釋

度分別吸取1.0 mL接種于2個平皿中，做活菌培養計數。

第4組:分別吸取稀釋液(PBS)與中和劑各1. 0mL于同-無菌平皿內，倒入同批次的培養基15~20

mL，培養觀察。

5.2.2.4.3 結果判定

第1、2和3組有相似量試驗菌生長，且菌量在1.0X 10 CFU/片~9.0X 10 CFU/片。計算組間菌落數

誤差率，其組間菌落數誤差率應不超過15%。第4組無菌生長，否則，說明試劑有污染，應更換無污染的

試劑重新進行試驗。試驗重復3次，每次試驗均應符合以上要求。

5.2.2.5試驗步驟

按5 g/片的量稱取抗菌樣品于無菌平皿內，置20°C 士1°C水浴5min,用無菌鑷子取染菌載體，使載

體完全浸沒于抗菌樣品中，立即計時。

待染菌載體與抗菌劑相互作用至各預定時間(以說明書規定時間為T,時間分別為0.5T,T,1.5T)，

分別取染菌載體加入5.0 m中和劑試管中，混勻。

經中和劑作用10min后，振蕩，將試驗菌洗下，分別吸取1.0 mL樣液，按活菌培養計數方法測定存

活菌數，每管樣液接種2個平皿。如平板上生長的菌落數較多時，可用PBS進行系列10倍稀釋后，再進行

活菌培養計數。